【#范文大全# #生物实验报告汇总十一篇#】随着人们的教育质量的提升，我们经常会需要使用到一些范文，范文能够运用到我们生活的方方面面，让我们来参考一些范文吧！经过整理，小编为你呈上生物实验报告汇总十一篇，欢迎阅读，希望对你有帮助。
生物实验报告(篇1)
篇1
实验名称:用高倍显微镜观察叶绿体和细胞质流动
一、实验目的
1.初步掌握高倍显微镜的使用方法。
2.观察高等植物的叶绿体在细胞质基质中的形态和分布
二、实验原理
高等植物的叶绿体呈椭球状,在不同的光照条件下,叶绿体可以运动,改变椭球体的向,这样既能接受较多的光照,又不至于被强光灼伤。在强光下,叶绿体以其椭球体的侧面朝向光源;在弱光下,叶绿体以其椭球体的正面朝向光源。因此,在不同光照条件下采集的葫芦藓,其小叶内叶绿体椭球体的形状不完全一样。
活细胞中的细胞质处于不断的流动状态，观察细胞质的流动，可以用细胞质基质中的叶绿体的运动做为标志。
三、材料用具
藓类的叶，新鲜的黑藻，显微镜，载玻片，盖玻片，滴管，镊子，刀片，培养皿，铅笔
四、实验过程(见书p30)
1.制作藓类叶片的临时装片
2.用显微镜观察叶绿体
3.制作黑藻叶片临时装片
4.用显微镜观察细胞质流动
五、讨论
1.细胞质基质中的叶绿体是否静止不动，为什么?
2.叶绿体的形态和分布与叶绿体的功能有什么关系?
3.植物细胞的细胞质处于不断的流动状态，这对于活细胞完成生命活动有什么意义?
4.用铅笔画一个叶片细胞，标出叶绿体的大致流动方向。
篇2
实验生物组织中还原糖、脂肪、蛋白质的鉴定
一、实验目的
初步掌握鉴定生物组织中还原糖、脂肪、蛋白质的基本方法。
二、实验原理
1.还原糖的鉴定原理生物组织中普遍存在的还原糖种类较多，常见的有葡萄糖、果糖、麦芽糖。它们的分子内都含有还原性基团(游离醛基或游离酮基)，因此叫做还原糖。蔗糖的分子内没有游离的半缩醛羟基，因此叫做非还原性糖，不具有还原性。本实验中，用斐林试剂只能检验生物组织中还原糖存在与否，而不能鉴定非还原性糖。
斐林试剂由质量浓度为0.1g/ml的氢氧化钠溶液和质量浓度为0.05g/ml的硫酸铜溶液配制而成，二者混合后，立即生成淡蓝色的cu(oh)2沉淀。cu(oh)2与加入的葡萄糖在加热的条件下，能够生成砖红色的cu2o沉淀，而葡萄糖本身则氧化成葡萄糖酸。其反应式如下:
ch2oh—(choh)4—cho+2cu(oh)2→ch2oh—(choh)4—cooh+cu2o↓+2h2o
用斐林试剂鉴定还原糖时，溶液的颜色变化过程为:浅蓝色棕色砖红色(沉淀)。
2.蛋白质的鉴定原理鉴定生物组织中是否含有蛋白质时，常用双缩脲法，使用的是双缩脲试剂。双缩脲试剂的成分是质量浓度为0.1g/ml的氢氧化钠溶液(a)和质量浓度为0.01g/ml(b)的硫酸铜溶液。在碱性溶液(naoh)中，双缩脲(h2noc—nh—conh2)能与cu2+作用，形成紫色或紫红色的络合物，这个反应叫做双缩脲反应。由于蛋白质分子中含有很多与双缩脲结构相似的肽键，因此，蛋白质可与双缩脲试剂发生颜色反应。
3.脂肪的鉴定原理脂肪可以被苏丹Ⅲ染成橘黄色，被苏丹Ⅳ染成红色
三、实验过程(见书p18)
四、实验用品(见书p18)
五、注意
1.关于鉴定还原糖的实验，在加热试管中的溶液时，应该用试管夹夹住试管上部，并放入盛开水的大烧杯中加热。注意试管底部不要接触烧杯底部，同时试管口不要朝向实验者，以免试管内溶液沸腾时冲出试管，造成烫伤。如果试管内溶液过于沸腾，可以上提试管夹，使试管底部离开大烧杯中的开水。
2.斐林试剂的甲液和乙液混合均匀后方可使用，切勿将甲液和乙液分别加入组织样液中。
3.蛋白质的鉴定中先加双缩脲a，再加双缩脲b
六、讨论
鉴定生物组织中还原糖、脂肪、蛋白质的根据是什么?
篇3
一、实验目的
1.观察植物细胞有丝分裂的过程，识别有丝分裂的不同时期。
2.初步掌握制作洋葱根尖有丝分裂装片的技能。
3.初步掌握绘制生物图的方法。
二、实验原理
在植物体中，有丝分裂常见于根尖、茎尖等分生区细胞，高等植物细胞有丝分裂的过程，分为分裂间期和分裂期的前期、中期、后期、末期。可以用高倍显微镜观察植物细胞的有丝分裂的过程，根据各个时期细胞内染色体(或染色质)的变化情况，识别该细胞处于有丝分裂的哪个时期，细胞核内的染色体容易被碱性染料着色。
三、材料用具
洋葱根尖、显微镜、载玻片、盖玻片、滴管、镊子、培养皿、铅笔、质量分数为15%的盐酸、体积分数为95%的酒精、质量分数为0.01g/ml的龙胆紫(或紫药水)
四、实验过程(见书p39)
1.洋葱根尖的培养(提前3—4天)
2.解离:5min
3.漂洗:10min
4.染色:5min
5.制片
6.镜检
五、注意
1.解离充分是实验成功的必备条件。解离充分，组织才能分散，细胞也不会重叠。
2.漂洗时间一定要足够，否则细胞染不上色。
3.染色时，染液的浓度和染色时间必须掌握好。特别是染色不能过深，否则镜下一片紫色，无法观察。
六、讨论
1.制作好洋葱根尖有丝分裂装片的关键是什么?谈谈你自己的体会。
2.在观察清楚有丝分裂各个时期的细胞以后，绘出洋葱根尖细胞有丝分裂的简图，并标明时期。
生物实验工作计划
实验室是学生学习和进行实验的主要场所，是生物探究学习的主要资源，是学生进行科学探究的重要方式。因此，学校高度重视生物实验室建设，配置必要的仪器和设备，确保每个学生都能进行实验探究活动，为学生开展实验探究活动创造了良好的条件。通过实验，使学生最有效地掌握进一步学习现代科学技术所必需的基础生物知识，培养初步的实践操作技能和创新能力。教学的重点放在培养学生科学实验能力与提高学生科学实验素养，使学生在获取知识的同时提高自学能力、运用知识的综合分析能力、动手能力和设计创新能力。
一、指导思想
本着为学生服务的思想，大力配合学科老师开展实验教学，培养学生熟练的实验操作技能。
二、重点工作
1、为新课程教学配备新的实验仪器。
2、保证每个实验按要求保质保量及时开出。
3、配合任科老师做好各年段学生实验强化课本知识的学习工作。
三、具体工作
1、100%开出演示实验、学生实验，并按要求(保证数量和质量)在教师上课前布置好每个实验，决不拖延时间影响教学。
2、上实验课时，(在我没课的情况下)去实验室巡视，帮助老师排除故障，解难释疑。仪器坏了、试剂不够，进行维修和补齐，指导帮助学生纠正错误的操作方法。
3、实验完毕，及时检查仪器的数量和质量，如有差错按制度处理;及时补充试剂量，保证下个实验的顺利进行;做好有关的实验记录(如时间、人数、容易出故障的地方及改进办法等)。
4、完善各项管理制度，如《实验室、仪器室使用管理制度》、《实验室安全守则》、《实验室有关玻璃破损赔偿规定》等，并上墙。经常打扫卫生，做到仪器无尘、教室整洁。
5、期初、期末各进行一次帐物校对，做到两者相符，并做好有关的报损记录。平时经常查看实验仪器和实验用品，能修的及时修理，不足的及时购买。
6、补充新课程教学所需的实验器材。
四、强化安全意识，确保实验室安全
确保实验室安全，明确实验室职责，定期检查灭火器材及其他设备，建立管理责任人自查，实验室组织抽查的安全检查制度。强化安全意识。
以实验室安全责任人为主、实验指导教师配合、系领导关心支持、学生配合，确保实验室全年不出现各种安全事故。
生物实验报告(篇2)
质粒DNA的提取、纯化及检测
姓名：XXX学号：2011001400XX年级：20xx级生物基地班 实验日期：20xx年9月16日—30日组别：6组 同组者：XX
一、【实验目的】
1、掌握碱变性提取法提取大肠杆菌中质粒DNA的原理和方法。
2、学习并掌握凝胶电泳进行DNA的分离纯化的实验原理。
3、学习并掌握凝胶的制备及电泳方法。
4、学习并掌握凝胶中DNA的分离纯化方法。
二、【实验原理】
1、质粒DNA的制备方法
质粒（Plasmid）是独立存在于染色体外、能自主复制并能稳定遗传的一种环状双链DNA分子，分布于细菌、放线菌、真菌以及一些动植物细胞中，但在细菌细胞中含量最多。细菌质粒大小介于1～200Kb之间，是应用最多的质粒类群，在细菌细胞内它们利用宿主细胞的复制机构合成质粒自身的DNA。
质粒DNA的制备包括3个步骤：①培养细菌，使质粒DNA大量扩增；②收集和裂解细菌；③分离和纯化质粒DNA。主要方法包括：碱裂解法：0。2molNaOH+1%SDS；煮沸裂解法：沸水煮沸40秒；SDS裂解法：10%SDS，一般用于质粒大量提取。在实际操作中可以根据宿主菌株类型、质粒分子大小、碱基组成和结构等特点以及质粒DNA的用途进行选择。本实验选择碱裂解法提取质粒DNA。
2、质粒DNA的提取——碱变性提取法
在细菌细胞中，染色体DNA和质粒DNA均被释放出来，但是两者变性与复性所依赖的溶pH值不同。在pH值高达12。0的碱性溶液中，染色体DNA的氢键断裂，双螺旋结构解开而变性；共价闭合环状质粒DNA的大部分氢键断裂，但两条互补链不完全分离。因为它们在拓扑学上是相互缠绕的。当用pH值4。6的KAc（NaAc）高盐溶液调节碱性溶液至中性时，变性的质粒DNA可恢复原来的共价闭合环状超螺旋结构而溶解于溶液中；但染色体DNA不能复性，而是与不稳定的大分子RNA、蛋白质—SDS复合物等一起形成缠连的、可见的白色絮状沉淀。这种沉淀通过离心，与复性的溶于溶液的质粒DNA分离。溶于上清液的质粒DNA，可用无水乙醇和盐溶液，使之凝聚而形成沉淀。由于DNA和RNA性质类似，乙醇沉淀
DNA的同时，也伴随着RNA沉淀，可利用RNaseA将RNA降解。质粒DNA溶液中的RNaseA以及一些可溶性蛋白，可通过酚/氯仿抽提除去，最后获得纯度较高的质粒DNA。
3、凝胶电泳进行DNA分离纯化
电泳（electrophoresis）是带电物质在电场中向着与其电荷相反的电极方向移动的现象。各种生物大分子在一定pH条件下，可以解离成带电荷的离子，在电场中会向相反的电极移动。凝胶是支持电泳介质，它具有分子筛效应。含有电解液的凝胶在电场中，其中的电离子会发生移动，移动的速度可因电离子的大小形态及电荷量的不同而有差异。利用移动速度差异，就可以区别各种大小不同的分子。因而，凝胶电泳可用于分离、鉴定和纯化DNA的片段，是分子生物学的核心技术之一。
凝胶电泳技术操作简单而迅速，分辨率高，分辨范围广。此外，凝胶中DNA的位置可以用低浓度荧光插入染料如溴化乙锭（ethidium bromide，EB）或SYBR Gold染色直接观察到，甚至含量少至20pg的双链DNA在紫外激发下也能直接检测到。需要的话，这些分离的DNA条带可以从凝胶中回收，用于各种各样目的的实验。
分子生物学中，常用的两种凝胶为琼脂糖（agarose）和聚丙烯酰胺凝胶。这两种凝胶能灌制成各种形状、大小和孔径，也能以许多不同的构型和方位进行电泳。聚丙烯酰胺凝胶分辨率高，使用于较小分子核酸（5—500bp）的分离和蛋白质电泳。它的分辨率非常高，长度上相差1bp或质量上相差0。1%的DNA都可以彼此分离，这也是采用聚丙烯酰胺凝胶电泳进行DNA序列分析的分子基础。虽然它能很快地进行电泳，并能容纳较大的DNA上样量，但是与琼脂糖凝胶相比，在制备和操作上繁琐。琼脂糖是从海藻中提取的长链状多聚物，由β—D—吡喃半乳糖与3，6—脱水—L—吡喃半乳糖组成，相对分子质量为104—105。琼脂糖加热至90℃左右，即可溶化形成清亮、透明的液体，浇在模版上冷却后形成凝胶，其凝固点为40—45℃。琼脂糖凝胶相对于聚丙烯酰胺凝胶分辨率低，但它的分离范围更大（50至百万bp），小片段DNA（50—20000bp）最适合在恒定轻度和方向的电场中水平方向的琼脂糖凝胶内电泳分离。琼脂糖凝胶电泳易于操作，适用于核酸电泳，测定DNA的相对分子质量，分离经限制酶水解的DNA的片段，进一步纯化DNA等。
琼脂糖凝胶电泳是一种常用的方法。在溶液中，由于核酸有磷酸基而带有负电荷，在电场中向正极移动。DNA在琼脂糖凝胶中的电泳迁移率主要取决于6个因素：样品DNA分子的大小、DNA分子的构象、琼脂糖浓度、电泳所用电场、缓冲液和温度。
三、【实验材料】
1、实验仪器
培养皿、接种环、三角瓶、酒精灯、恒温振荡培养箱、50ml离心管、1。5ml塑料离心管（Eppendorf管）、高速离心机、漩涡振荡器、微量移液器、不同型号枪头、天平、制胶槽、梳子、电泳仪、吸管、量筒、微波炉、灭菌锅、恒温水浴锅、试剂瓶、卫生纸和记号笔、手套等。
2、实验试剂
LB培养基，抗生素Ap（氨苄青霉素），溶液Ⅰ，溶液Ⅱ，溶液Ⅲ，RNaseA母液，TE缓冲液，饱和酚，氯仿/异戊醇混合液，酚/氯仿/异戊醇（PCI）混合液，预冷无水乙醇，TAE电泳缓冲液（10×），上样缓冲液（6×），琼脂糖，溴化乙锭（EB），DNA相对分子质量标准物DNA Marker λ/Hind Ⅲ，5mol/L pH 5。2的醋酸钠。
四、【实验步骤】
1、准备实验
配制LB液体培养基，分装到100ml的三角瓶中20ml，300ml的三角瓶中50ml，另配LB固体培养基；准备1000ul、200ul、10ul移液枪尖各一盒，1。5ml离心管若干于500ml三角瓶中，50ml离心管2个 ，将上述物品包好连同配好的培养基一同灭菌。
2、菌体培养
在含有Ap的LB平板上挑取一环携带有质粒pUC19的E。coli DH5单菌落，接种于20mlLB液体培养基中进行37℃振荡过夜培养，培养基中加Ap100ul
（100ug/ml），质粒pUC19具有Ap抗性基因，使得带有pUC19的质粒得以生长。 过夜培养后菌体量大，杂质较多，然后用移液枪吸取过夜培养物2ml转接于50mlLB液体培养基中，培养基中加入Ap250ul，37℃振荡培养4—6h至对数生长期后期，生长速率快，代谢旺盛，酶系活跃，杂质少，适合提取质粒。
3、质粒提取
（1）称量空的50ml离心管的重量为14。331g，然后将三角瓶中的菌液倒至管中，不能倒满，液面距管口约1cm，7000rpm离心5分钟后弃去上清液，收集菌体细胞。
（2）向离心管中悬滴加入5ml冰预冷的溶液Ⅰ打散菌体洗涤，用漩涡振荡器使之充分悬浮后用枪尖吹吸混匀，同步骤（1）离心，弃去上清，将离心管倒置于吸水纸上，使上清液全部流尽干燥，然后称重得14。437g，则菌体质量为106mg。
（3）洗涤后每100mg菌体应加入冰预冷的溶液Ⅰ1ml，106mg菌体按100mg菌体处理，加入溶液Ⅰ1ml，打散菌泥、吹吸混匀，冰浴5min。溶液Ⅰ中的葡萄糖使
溶液密度增加，悬浮后的大肠杆菌不会快速沉积到管子的底部；维持渗透压，防止细胞提前破裂，防止DNA受机械剪切力作用而降解。EDTA是Ca2+和Mg2+等二价金属离子的螯合剂，可抑制DNase的活性，抑制微生物的生长。Tris—Cl溶液提供适当的pH。
（4） 按比例加入新配制的溶液Ⅱ2ml（与溶液Ⅰ对应），轻加轻摇，冰浴5min。溶液变清亮透明粘稠如蛋清状。溶液Ⅱ中的NaOH使细胞膜发生了从bilayer（双层膜）结构向micelle（微囊）结构的相变化导致细胞溶解。同时，强碱性使染色体DNA、质粒DNA和蛋白质变性；SDS为下一步沉淀做铺垫。
（5）按比例加入冰预冷的溶液Ⅲ1。5ml（与溶液Ⅰ、Ⅱ对应），轻加轻摇，冰浴10min。溶液出现白色絮状沉淀。沉淀为蛋白质SDS复合物、细胞碎片和其他大分子成分。溶液Ⅲ中的HAc中和NaOH，因为长时间的碱性条件会打断基因组DNA，只要是50－100 kb大小的片断，就不能再被PDS共沉淀。同时变性的质粒DNA复性。反应形成的高盐环境进一步加速了沉淀。
（6）12000rpm离心15min，白色沉淀聚集在离心管一侧，用移液枪将上清液转移到另一洁净的离心管中。然后向上清液中加入1/10体积的3MNaAc混匀，加入2倍体积的冰无水乙醇，混匀，—20℃下沉降30分钟。乙醇可以任意比和水相混溶，乙醇与核酸不会起任何化学反应，对DNA很安全，因此是理想的沉淀剂。 DNA溶液是DNA以水合状态稳定存在，当加入乙醇时，乙醇会夺去DNA周围的水分子，使DNA失水而易于聚合。在pH为8左右的溶液中，DNA分子是带负电荷的，加一定浓度的NaAc或NaCl，易于互相聚合而形成DNA钠盐沉淀。
（7） 以12000rpm离心15min，小心倒去上清液，得到DNA沉淀。加入3ml70%冰乙醇，轻轻地覆盖沉淀，不打散沉淀，洗涤一次。
（8）以12000rpm离心5min，离心管底部DNA沉淀所在面应与收集沉淀面一致。去掉上清液，将离心管上沉淀部位做好标记，将离心管倒置于吸水纸上，干燥5min。粗提取的质粒呈浅黄色，随着水分的减少质粒变为无色。所以为了完全溶解质粒，要在离心管上标记质粒所在位置。
（9）将DNA沉淀溶于1mlTE缓冲液中，移液枪吹吸助溶，然后将溶解液转移到一个Eppendorf管中。TE是pH缓冲液，为DNA提供稳定的生理状态，呈弱碱性，有利于保护碱基对。同时含有EDTA是二价阳离子的螯合剂，抑制DNA酶作用。
4、质粒纯化
（1）Eppendorf管中加入RNase A（纯浓度＞50ug/ml），37℃保温0。5—1h
（2）将上述的溶液平均分配到2个1。5ml的微量离心管中，每管0。5ml，分别加入与溶液等体积的（500ul）Tris饱和苯酚溶液，振荡混匀，7000rpm，离心5min，上清液转移到一洁净的Eppendorf管中。苯酚是经Tris饱和后的，显黄色。苯
酚加入后，溶液分层，苯酚向下，下层呈浅黄色，上层溶液无色，在中间产生大量白色沉淀，此为变性后的蛋白质。
（3）加入等体积的（500ul）苯酚/氯仿溶液（1：1），振荡混匀， 7000rpm，离心5min，上清液转移到到另一洁净的Eppendorf管中。苯酚是强的蛋白变性剂，但是苯酚留在质粒溶液中会影响DNA的酶切，它本身易被氧化，会损伤质粒。氯仿也是蛋白变性剂，但是比酚弱，且能溶解质粒中的脂类，溶解苯酚，去除溶液中的苯酚。异戊醇则可起消除抽提过程中出现的泡沫，有利于分层更明显。此时溶液中已看不到明显的白色沉淀，但仍有蛋白质的存在。
（4）加入等体积的氯仿溶液，振荡混匀， 7000rpm，离心5min，上清液转移到一洁净的Eppendorf管中，得上清液400ul。
（5）向上清液中加入1/10体积的NaAc混匀，再加入2倍体积的冰无水乙醇，混匀，—20℃下沉降30分钟。
（6）以12000rpm，离心15min，弃去上清液，得到DNA沉淀，为白色。
（7）向DNA沉淀中加入70%冰乙醇200ul，不打散沉淀，洗涤。然后以12000rpm离心5min，离心管底部DNA沉淀所在面应与收集沉淀面一致。
（8）去掉上清液，将离心管倒置于吸水纸上，室温干燥。用50ulTE溶解于1管中。
5、质粒检测
（1）称取0。4g的琼脂糖，置于一锥形瓶中，在三角瓶上标好液面位置，加入40ml的1×TAE电泳缓冲液，再加入5—10ml重蒸水，以补充在溶胶过程中损失的水分。然后置微波炉加热至完全溶化，溶液透明。冷却至50℃左右，倒入制板槽制板。
（2）待胶凝固后，小心拔起梳子，使加样孔端置阴极段放进电泳槽内。在槽内加入1×TAE 电泳缓冲液，至液面覆盖过胶面2—3cm。取1μl加电泳载样液和3μl质粒样品于小纸片上，用移液枪混匀。
（3）电泳1h，观察溴酚兰的带（蓝色）的移动。
（4） 把胶槽取出，小心滑出胶块，放进EB溶液中进行染色，完全浸泡约5min。
（5）凝胶成像仪观察。
五、【注意事项】
（1）滴加溶液II时，要逐滴加入，且要轻加轻摇溶液使之混匀，整体动作要快，因为强碱在溶液中停留时间不能过长，否则会破坏质粒DNA。
（2）加入溶液III后，生成了大量的絮状沉淀，溶液III中和强碱使质粒复性，不可剧烈震荡， 防止染色体DNA断裂，应该上下颠倒离心管，使其混匀。
生物实验报告(篇3)
一、课题的提出
创新时代赋予教育创新使命，综合高考要求呼唤综合创新能力培养。深化素质教育改革，加强综合创新能力培养是对数干年的“应试+科举”式的传统教育模式的拼弃。尽管经过了现代化教育思想和理论的说孔，但仍存在部分教师教学观念和方法比较陈旧，尤其是创新意识创新实践在教学中使用缺乏足够的认识。古今中外的教育家创立了不少有效的教学方法，为我们借鉴应用，提供了充分的条件。我们在运用教学方法时，做到内容与形式的统一，根据教材不同性质的内容和学生的实际情况，运用不同的教学方法，挖掘教材中创新的教育资源，加强创新教育研究，使教学方法具有灵活性、多样性和创造性。
二、课题的实验目标
1、明确实现高中生物课程目标：养成实事法语是的科学态度，养成勇于探索不断创新的精神与合作精神。发展比较、判断、推理、分析、综合等思维能力，初步形成创造性思维品质和创新意识，能够运用学到的生物学知识评价和解决某些实验问题。2、确立高中生物综合创新教育模式。
3、通过实验研究，全组教师树立正确的教育思想，加强学习，不断进行知识创新，能力创新，勇于探索，能利用各种现代化教学手段和现有实验条件进行综合创新，教育研究，全面提高业务素质和教学效果。
三、实验过程
㈠实验对象
我们采用随机抽样方法，选取成绩一般的两个班作为实验班级。
㈡实验内容：
1、采用生动活泼，灵活多样的教学手段和教学方法，引导学生自主学习，自主探索，诱发学生对生物学的兴趣和求异创新的思维火花，逐步形成一套适合高中生心理和思维特点的新的.教学模式。
2、开展STS教育实验。针对高考改革的要求，联合社会发展，热点问题及生产生活实际，让学生了解关心社会发展与科技进步，激发创新欲望。用谈话法、讨论法、实验法及分析两部大开发，环境污染、疾病与健康等热点问题，提高学生创造性地解决问题的能力。
3、高二生物课将研究性学习作为教材改革的主要内容之一。充分利用现有实验器材与设备，校园中生物基地，培养学生合作学习、合作研究的精神，使学生得到实践锻炼的机会和直接的创新体验，增强创新意识，培养创新情感，提高创新能力。
4、高三生物复习中主要是加强综合问题的研究，注意知识的渗透融合，是实现知识综合化、系统化、网络化，培养综合创新能力的有效手段。
㈢实验方法
本课题的研究采用以实验研究为主的方法，辅之以经验总结法、文献法和调查分析法，同时注意了资料的积累与分析，总结出研究报告一份，成果有论文、总结及创新教育实便资料多件。
㈣实验步骤
1、准备阶段：我们首先注意优化课堂教学结构，突出实验创新内容的安排。确定试点班级与实验教师，拟定实验方案，形成初其数据资料。为实验顺利进行提供良好物质基础。
2、实施阶段：收集整理资料，加强理论学习，通过不同途径指导学生创新实践。
⑴实施实验变量和控制无关变量。其中自变量：科学合理地指导学生的创新实践活动，固变量：提高学生学习兴趣和操作技能，全面提高学生创造性地解决问题的创新思维和创新能力。教师、学生、教学条件既是实验研究的自变量和固变量，也是影响实验效果的相关变量，在实验中，不断排除不列于实验研究开展和影响实验信度的干扰因素，由教师在实验班中施行实验内容，作用于实验对象。
⑵测试。在每节实验课里，对课堂教学效果进行跟踪测试。
①观察：由实验教师对学生的课堂行为进行观察记录、统计。主要观察学生对教学内容是否感兴趣。
②测量：包括达标测试，课前安排好内容，操作熟练者为达标。
在实施阶段，教师边实验、边学习、边研究、边小结，每两周举行一节观摩课，积累典型课例，丰富创新教育素材。
3、总结阶段
按实验方案进行总结、整理资料，统计分析数据，汇编成果目录、积累成功实践的素材，为进一步扩大实验研究成果，更好地开展创新实践做好物质准备。
四、实验成果
㈠构建了高中生物实验教学与研究性学习自学辅导模式：
在原有的课堂教学中，一贯是教师讲，学生听，实验课上教师讲，学生做。在课堂上学生始终处于被动地位，丧失了探索、求知的学习主动性。没有做过的实验学生就束手无策，研究性学习更是无从下手，不会设计。为此，我们提出在教学基础知识训练基本技能时注重启发诱导学生自我探索，自行学习，最后形成新技能这一自学辅导模式。培养了学生自我学习的能力和对生物不断探索的强烈欲望。
教学模式可根据具体研究的内容与主题，所采取的研究手段等构建。如“酸雨对植物的影”一课采用创设情景提出问题小组讨论实地观测数据分析反馈应用的模式；“植物对水分的吸收”一课采用确定目标提出假设实验研究结果分析归纳总结的模式。构建教学模式必须注意以下几个要素；
①学生主体性的体现要充分；
②教师的指导作用要明确；
③学生研究的层次要分明；
④要有利于培养学生的创新精神和团队合作精神。
探究式教学模式的一般操作框架如图：
㈡激发了学生的求知欲望，提高了学生的探究能力实验班学生通过一年多的探究实践，对实验与研究性学习内容有了强烈的兴趣，教育生活化，生活课题化，学生从生活和社会实践中寻找研究性学习的材料。如《校园植物资源调查》、《校园生态绿化方案设计》、《家用洗衣粉与河水污染》、《酸雨的危害调查》等。在施教过程中，综合了各学科知识，利用校园网和校内外的现有资源培养学生的创新精神和实践能力。不同学生对同一课题设计方案比较分析中，优化探究方法是开发学生思维空间的好办法，探究活动中给予学生充分的活动空间和表现空间，为学生创新意识的激发及创新能力的培养提供必要的保障，为优化师生关系，实施创新教育落实素质教育，迈出坚实的步伐，在省生物学奥林匹克竞赛中有2人获省级奖，6人获市级奖励，高二生物实验操作考试通过率100%，成绩在同类学校中名列前茅。㈢教师的业务能力有了一定提高
通过实验和总结，我们取得了一些开展研究性学习和指导学生探究实践的经验和方法，实验教师提高了业务能力丰富了教育思想，我们的教研课多次受到了市县教研室领导及兄弟学校同仁的好评。使我校生物教学迈上了一个新的台阶。已发表论文5篇，校级交流刊出多篇，在20xx~20xx学年度高三生物三次市统考中，我校生物均分在全县完中分别列第二名、第二名、第一名。呈现稳步上升态势。三位教师在市专业技能比赛中获奖。
五、课题研究的成效与思考
1、利用现有校内外资源条件，结合教材中的有关内容，拓展学生思维空间，进行实验探究活动，对学生个性的张扬具有独特价值；对于培养学生探究意识和终身学习能力，为学生个性的发展提供广阔的空间是切实可行的，也是行之有效的。
2、课题的研究主要是专题性研究，为我们采用开放式，滚动式管理模式开发校本课程，开展更富有创造性的探索，最大限度地发挥学生的主动性提供了可资借鉴的经验。
3、受人力限制，教师课时多，对于学生个别辅导，全面提高方面还有一定的发展空间，有待于我们把研究成果进一步推向深入。
生物实验报告(篇4)
第十次实验分离产淀粉酶微生物
学院：生命科学学院
专业：生物科学类
年级：20xx级
姓名：
学号：1007040085
20xx年XX月XX日
实验十分离产淀粉酶的微生物
一、实验目的
1、熟悉常用微生物培养基（牛肉膏蛋白胨培养基）的配制方法。
2、学习各种无菌操作技术，并用此技术进行为微生物稀释分离、划线分离接种。
3、用平板划线法和稀释涂布平板发分离微生物。
4、认识为微生物存在的普遍性，体会无菌操作的重要性。
5、掌握分离产淀粉酶微生物的试验方法和步骤，了解产淀粉酶的微生物种类及形态。
二、实验原理
土壤是微生物生活的大本营，是寻找和发现有重要应用潜力的微生物的主要菌源。不同土样中各类微生物数量不同，一般土壤中细菌数量最多，其次为放线菌和霉菌。一般在较干燥，偏碱性、有机质丰富的土壤中放线苗数量较多；酵母菌在一般土壤中的数量较少，而在水果表皮、葡萄园、果园土中数量多些。本次实验从土壤中分离产淀粉酶的微生物，应该取那些富含产淀粉酶的微生物的土样。从复杂的微生物群体中获得只含有一种或某一类型微生物的过程称为微生物的分离与纯化。常用的方法有
1、简单单细胞挑取法
2、平板分离法和稀释涂布平板法
此次实验采取的是平板分离法和稀释涂布平板法结合，该方法操作简单，普遍用于微生物的分离与纯化。其原理包括：
1)稀释后的细胞悬液图不在平板上可以分离得单个菌株
2)在适合于待分离微生物的生长条件（如营养、酸碱度、温度与氧等）下培养微生物，或加入某种抑制剂造成只利于待分离微生物的生长，而抑制其他微生物生长的环境，从而淘汰一些不需要的微生物。
3)微生物在固体培养基上生长形成的单个菌落可以是由一个细胞繁殖而成的集合体。因此可通过挑取单菌落而获得纯培养。获得单菌落的方法可通过稀释涂布平板或平板划线等方法完成。
以淀粉作为惟一碳源的培养基培养未分离细菌，能产淀粉酶的细菌能生长，且菌落周围出现透明圈（淀粉不透明，被消化后变透明），则产淀粉酶微生物被分离出来。本实验采用透明圈检验法检测培养物中是否有产淀粉酶微生物的生长。
三、实验仪器及试剂
1、器材：
培养皿、载玻片、盖玻片、普通光学显微镜、量筒、滴管、吸水纸、烧杯、三角瓶、酒精灯、玻璃棒、接种环、镊子、恒温培养箱、高压蒸汽灭菌锅、、天平、滤纸、pH试纸等。
2、试剂：
配制牛肉膏蛋白胨培养基的原料（牛肉膏、NaCl、琼脂、蛋白胨）、淀粉、卢戈氏碘液、蒸馏水、250ml三角瓶中装90ml无菌水加20粒玻璃珠，作稀释用等。
3、土样：
取自贵州大学农生楼后土壤10g，地下10cm左右。
四、实验步骤：
1、配制牛肉膏蛋白胨培养基：
1）配制牛肉膏蛋白胨琼脂培养基400ml（用于11个平皿和7支试管斜面）牛肉膏0.5%…………………………………2g
蛋白胨1%……………………………………4g
NaCl0.5%…………………………………..2g
琼脂2%……………………………………..8g
淀粉0.5%........................................2g
pH……………………………………7.0~7.2
（2）无菌水的制备
分别取9ml蒸馏水加入5支试管中，加塞后用报纸包扎捆绑，放入高压蒸汽灭菌锅灭菌备用。取90ml蒸馏水加入250ml三角瓶中，同样的操作，灭菌备用。
（3）器皿的准备
将刻度吸管用报纸包扎，培养皿装入专用灭菌杯分别放入高温灭菌箱灭菌备用。
2）倒11个平板和7支试管斜面，包扎，0.1Mp、121℃、灭菌30min.
2、制备土壤稀释液：
称取土样10g，放入盛有250ml无菌水的带有玻璃珠的三角瓶中，振荡摇匀10min使土和水充分混合，然后用移液枪从三角瓶中吸取1ml（此操作要求无菌操作），加入另一盛有9ml无菌水的试管中，混合均匀，以此类推分别制成制成0.01、0.001、0.0001、0.00001、0.000001不同稀释度的土壤溶液。
3、涂布培养：
0.00001、0.000001浓度的土壤稀释液作为涂布平板培养的对象，将其分别涂布在3个牛肉膏蛋白胨培养基中，共6个培养基，标号，37°C温箱培养48h。
4、选取目的菌株：
两天后对土壤溶液的微生物培养基进行观察，并取两个菌落形态完全一致的分散的单个菌落，对其中一个喷洒卢戈氏碘液，观察其菌落周围是否出现透明圈，如果出现透明圈说明此菌株产淀粉酶，是目的菌株，记录细菌明显的性状。
生物实验报告(篇5)
题目：用短语，不用句子：……的研究，不要用学科题目作标题；英文：A study of…… 通讯作者：BOSS，支持者
摘要：目的、方法、结果、结论。不宜举例，不用引文。英文摘要调整一下，符合英文顺序。关键词：分子式、化学式不作为关键词，要写全名。常规技术不做关键词如离心，英文关键词用,隔开
1 提出课题的现实情况和背景；
2说明课题的性质、范畴及其重要性，突出研究的目的或者需要解决的问题；
3 前人研究成果及其评价；
4 达到研究目的的研究方法和实（试）验设备；
5 研究工作的新发现。
研究背景理论依据（XX是什么，研究进展，实验原理包括方法原理、实验对象原理即为什么选这两个对象，有无关联，判断原理的依据）、研究目的（要解决什么问题）、研究方法（怎样研究）400-500字左右，文献综述包括在前言里。
材料：写主要的，例如树脂，Tris，其他就写国产分析纯，如NaCl，烧杯、试管不写
方法：众所周知的方法不写，如离心。写出方法名字，注明参考文献，重点写改进方法。例如：提取效果为……的电泳进行检测
结果：比例尺、图标、放大倍数；不进行评论评价分析讨论，实验结果不要原始浓度，电泳的各个泳道是什么一定要写出来。洗脱图自己重新做一个，标注单位。柱层析的峰要写标号，注明是什么蛋白。
结论：实验表面结果，反映了什么现象。相同因素之间，不同因素之间。方法怎么样。 讨论：得到这样结果的可能原因，原因大小程度。建议、改进可放分析讨论。1讨论为什么会出现这样的结果出现意味了什么？用理论解释。2比较与前人异同（异：解释差异；同：更加证明）3研究有什么新发现，可能的原因4实验的不足
其他：同一结果图表不共存，如果图不能直接说明可以附上表，图上无多余的线，违反总体趋势的个别点可以去掉。折线图横轴按实验进行顺序编写。小数点位数保持一致。 （适用于细胞生物学及植物生理学）
微生物及生物化学有待补充。。。
生化海报：IgG与别人标准进行比较，pro标准曲线不过0点，标准pro只有280nm，几个样都要算。
电泳：上样顺序、其他分子量、marker分子量、分析趋势（迁移率一般达不到0.999） 紫外：峰1，峰2，那个是我们的
分析：最后有结论，浓度、回收率提取出来，图有序列关系，按实验进行顺序
要有说明，表名称，要有整体联系性。
生物实验报告(篇6)
生物技术制药实验报告
人表皮生长因子（hEGF）在大肠杆菌中的
表达与纯
第一节引言
1.1表皮生长因子(EGF)概述
生长因子在人体中的信号传导部分起着关键的作用，它可通过与细胞表面的蛋白质受体结合，参与细胞的各种生命活动。生长因子可以是维生素，碱基，多肽等。所研究的表皮生长因子，就是一种人机体细胞合成的一种多肽。在生物体内，每个细胞的生长状态不同，在不同组织中的细胞的表皮生长因子参与生长、增值、死亡等过程。
目前，表皮生长因子已得到广泛应用。在许多公司已经开始研发甚至是生产出EGF，多种疾病的诱发原因很多，我们可以用EGF来进行详细的诊断。之后致病的查出原因，给病人减少心理的压力，带来一线生机。在经过强烈的光刺激后，尤其是激光，人们的眼部会有很大的损伤，最严重的就是眼角膜损伤，无法修复。人体在经过紫外线的照射下皮肤的损伤以及高温、蒸气、火等造成的皮肤大面积与原来的不一样的皮肤。对于这些伤害，我们可使用含有可促进人体表皮细胞的新陈代谢EGF的药膏或者是化妆品，使皮肤变得如初。
在最早研究表皮生长因子的时候就只是证明是多肽，还没有命名。是由Cohen在1960年，在提取神经生长因子时，意外发现除此种物质以外的一种多肽[2]。多个科学家对其充满好奇心，在之后的十年内，Savage真正的研究清楚，命名此种多肽为表皮生长因子。
1.2 表皮生长因子(EGF)的结构与性质
不同的生物中，表皮生长因子的蛋白一级结构不同。研究表明家族成员一般在多于50个氨基酸，而少于80个氨基酸，与我们所熟悉的胰岛素一样，表皮生长因子是由前体加工成的成熟的多肽，在具有生物活性[4]。如人体中的表皮生长因子是由53个氨基酸组成。
整个hEGF分子由两个结构域组成。残基1～33，形成N一端结构域；34～53为C一端结构域；成熟hEGF的序列位于单链多肽的C一末端附近，由53个氨基酸残基组成，并且其C一端和N一端分别由Arg／Asp ／Arg／His邻接，故
成熟的EGF分子，可以经专一性Arg内肽酶的作用，从前体释放[，因此分子在一定的条件下生物活性表现“顽强”[8]。我们知道同一种酶在不同的生物中有不同的生物效应，同时不同的酶在不同的生物中会有相同的生物效应，hEGF也会有此种现象。hEGF-β和hEGF-γ是hEGF的两种形式，在分子结构和同源性中相似度高，在蛋白中一级结构中即使是在C末端的某个位置上仅仅只有一个Arg的差别，当它们作用于不同细胞中的同一个受体，在生物体中的作用是一样的[9]。
与许多古细菌中的酶一样如生活在温泉中古细菌，人体表皮生长因子在活性等稳定性；许多蛋白质在具有强列的催化效率的酶如胰蛋白酶作用下肽链被断掉，而表皮生长因子耐它的消化。EGF在狭小的活性微环境中，由于常见的丙氨酸、苯丙氨酸和赖氨酸[11]会提供作用基团，表皮生长因子才能与受体结合反应。多肽具有N端和C端，有的在生物活性中不起作用，有的是至少有一段起作用，据研究表明，表皮生长因子结构的两端在细胞的生长中都很重要。
1.3 EGF的生物学效应及应用
细胞通过在信号传导的过程中有多种方式包括直接或间接的接触。自分泌或旁分泌是hEGF作用的方式，在生物体内它亦可以与其他的因子结合作用于细胞。EGF生物效应很多，如下所述：
肠道、角膜、胃等多种组织创伤的恢复的试验研究[烫伤、创伤及外科手术伤口的愈合，使病人的痛苦少一点。
生物实验报告(篇7)
实验目的
⒈学习并掌握动物细胞培养的无菌操作技术。
⒉了解原代细胞培养的基本方法及操作过程。
⒊学习细胞计数及营养液的配制。
实验原理
⒈细胞原代培养
原代细胞培养是指直接从动物体内获取的细胞、组织和器官，经体外培养后，直到第一次传代为止。这种培养，首先用无菌操作的方法，从动物体内取出所需的组织（或器官），经消化，分解成单个游离细胞，在人工培养下，使其不断的生长及繁殖。
细胞培养是一种操作繁琐而又要求十分严谨的实验技术。要使细胞能在体外长期生长，必须满足两个基本要求：一是供给细胞存活所必须的条件，如适量的水、无机盐、氨基酸、维生素、葡萄糖及其有关的生长因子、氧气、适宜的温度，注意外环境酸碱度与渗透压的调节。二是严格控制无菌条件。
⒉细胞死活鉴定死活细胞的鉴定方法有很多种，常用的.有染色法和仪器分析法。染色法是常用的细胞死活鉴定方法，简便，易于操作。不同的死活细胞鉴定方法有各自不同具体的反应机理，但无论采用何种办法，都是利用了死活细胞在生理机能和性质上的差异。
染色法分化学染色法和荧光染色法，根据染色机理的不同，染料或使死细胞着色，或使活细胞着色。
死活细胞在生理机能和性质上的差异主要包括：
☆死活细胞细胞膜通透性的差异：活细胞的细胞膜是一种选择性膜，对细胞起保护和屏障作用，只允许物质选择性的通过；而细胞死亡之后，细胞膜受损，通透性增加。常用的以台盼蓝鉴别细胞死活的方法就是利用了这一性质。台盼蓝，又称锥蓝，是一种阴离子型染料，不能透过完整的细胞膜。所以经台盼蓝染色后只能使死细胞着色，而活细胞不被着色。甲基蓝有类似的染色机理。植物细胞的质壁分离也可鉴定死活。
☆死活细胞在代谢上的差异：是采用美蓝染料鉴定酵母细胞死活的依据。美蓝是一种无毒染料，氧化型为蓝色，还原型为无色。由于活细胞中新陈代谢的作用，使细胞内具有较强的还原能力，能使美蓝从蓝色的氧化性变为无色的还原型，因此美蓝染色后活的酵母细胞无色；而死细胞或代谢缓慢的老细胞，则因它们的无还原能力或还原能力极弱，使美蓝处于氧化态，从而被染成蓝色或淡蓝色。
除此之外，还有一些细胞器的专有染料。如液泡系的专有染料中性红。中性红是一种低毒性染料，可以使活细胞液泡着红色，而细胞质和细胞核不被着色；死细胞的液泡不被着色或浅染，染料弥散于整个细胞中，细胞核和细胞质被染成红色。有时侯为了增加染色效果可以将两种染料结合使用，如甲基蓝-中性红混合染色法。
实验用品
⒈材料小白鼠
⒉试剂
台盼蓝、伊红、PBS缓冲液、细胞培养液（含生长因子）
⒊器材
剪子、棉球、75%酒精、移液枪、无菌操作台、正置光学显微镜、倒置光学显微镜、解剖盘、滴管、离心管、离心机、注射器、Eppendorf管、培养皿、酒精灯、塑料培养皿、载玻片、盖玻片、血细胞计数板
实验步骤
⒈取材
取小鼠一只，采用断头法处死。清水洗小鼠浸入75%酒精中消毒3min，取出转入超净工作台内的解剖盘中，无菌操作打开腹腔，取出其脾脏，除去其周围的脂肪组织，并用PBS液自上而下淋洗1-2次，转入无菌培养皿中待用。
⒉分离脾细胞
用滴管向培养皿中注入30滴PBS缓冲液，再用“L”型针头注射器在皿中吸取0.2毫升PBS液注入脾脏，注射时沿长轴注射。然后再用针头在脾脏上扎眼，并用“L”型针头轻轻刮出脾细胞。在均匀吹匀脾脏细胞。
吸取上述分离的单个脾细胞悬液，放入Eppendorf管中，使量至1mL，以1000r/min离心5min。⒊培养脾细胞
取塑料培养皿一套，用移液枪吸取培养液2mL加入塑料皿中，并将皿标记待用。取离心后的Eppendorf管，弃去上清液，用移液枪（200ul）吸取塑料皿中的培养液400ul加入弃去上清的Eppendorf管中，用枪头吹匀管底的脾细胞，吸取200ul脾细胞悬液接种于上述塑料皿中，混匀后放入37°C，5%CO2的培养箱中培养。
⒋配制染液
用生理盐水配成5%台盼蓝染液，备用。⒌染色
取0.5mL细胞悬浊液放入试管中，加入1-2滴染液。混合。2-5min后将细胞放在血细胞计数板上观察死活情况，注意不要有
气泡产生，放大倍数为10x10。染色后活细胞不着色，死细胞显示蓝色。注意染色时间不能超过15min，否则染液将细胞毒杀。
⒍计数
在10x10倍的显微镜下观察，计算血细胞计数板的4个4小方格的细胞数量。包括细胞总数与死细胞数量。压线者计上不计下，计左不计右。
⒎计算细胞活力
根据公式：细胞活力=(总细胞数-死细胞数)/总细胞数×100%
实验结果
台盼蓝染色后的细胞（10x10）伊红染色后的细胞（10x10）
总细胞数和活细胞数统计表（10×10）
项目自己培养细胞老师培养细胞总细胞数个/ml活细胞数个/ml细胞活力1.4×1067.5×1053.0×1055.5×10521.4%73.3%分析与讨论
⒈结果分析
本次实验中我们小组自己培养细胞所测细胞活力为21.4%，并不算高，分析得应有以下原因可能影响实验结果（包括误差）：
⑴若在无菌操作的过程中操作不规范，导致染菌，会极大的影响观察，导致实验失败。
⑵若在离心分离呈单细胞的过程中离心机转速过快或时间过长很可能会导致细胞破裂，导致小鼠脾细胞大量死亡。
⑶染色时间过长，或观察时间过长都会导致染色试剂将细胞杀死，使细胞活力骤降，这是导致细胞活力比较低的重要原因。
⑷实验中的一些操作不正确或不规范的情况、计算带来的误差等也会直接导致实验误差。
⒉注意事项
⑴严格进行动物消毒，需用75%酒精消毒。
⑵严格进行无菌操作，防止细菌、霉菌、支原体污染，避免化学物质污染。
⑶吸取液体前，瓶口和吸管硬行火焰消毒；吸取液体时，避免碰撞。
⑷离心管入台前，管口、管壁应消毒。
⑸实验者离开超净台时，要随时用肘部关闭工作窗。
⑹器材使用时既要注意用火焰消毒，又要防止烫伤、烫死细胞。
生物实验报告(篇8)
实验室微生物检测报告
1.材料与方法
1、1 材料
1、2 溶液和试剂 无菌水。
3 仪器和其他用品
灭菌棉签（装在试管内），试管架，煤气灯或酒精灯，记号笔和废物缸等。
1、2 步骤和方法
1 称量
制作十二个肉高蛋白琼脂平板，约需要称量水2 熔化
按上述顺序将材料分别放到一大烧杯中混合加热至其熔化。 1、3 调节PH值
待琼脂熔化后，调节溶液PH至4 转移灭菌
将溶液从烧杯中转移至锥形瓶中，塞上棉塞加牛皮纸包裹后同洗净的培养基和放有棉塞的试管一同放入高压灭菌锅里，灭菌5 接种
最后，将锥形瓶中溶液在酒精灯火焰旁转移至灭菌后的培养皿中，等待其冷却固定后便可接种。
1 编号并保留空白
将做好的十二个培养基分别编号2 分梯度制作空气培养基
按时间顺序每隔五分钟打开才合上。
2、3 接种环境中微生物
将第纸币、口腔、自来水和手指上的微生物，培养基编号分别为9号培养基。
3 微生物恒温培养
将十二个培养基均放入恒温培养箱中在37°C条件下恒温培养两天左右，即可进行观察。
1 结果与分析
2、1 实验结果
表1 实验室和环境和人体表面微生物恒温培养结果统计表
2、2 结果分析
实验结果可以看出，地面上的微生物种类自然是最多的，而且数量庞大，其菌落表面粗糙，可见有很多无荚膜的种类存在，比较混杂；实验台虽然数量明显不如地面，但其种类却也很多，菌苔中间薄周围厚，猜测微生物正在扩散中； 像口腔、纸币、自来水、手指上也有大量的微生物，只是数量明显较少，而且种类比较单一，但基本上都有乳白色的菌落，所以猜测有放线菌存在，只是暂时无法确定；而空气中的微生物种类很多，但是数量只能说短时间内的并不多，但根据实验时间的增长，微生物的数量也迅速的增加，可以看出我们平时所在的空气中的微生物是非常丰富的，微生物无处不在，另外，有很多乳白色、黄色、橘黄色的菌落，所以应该有放线菌，但其他颜色的不知，在形状上，有成环状和放射状的菌落猜测是因为扩散造成的现象。
生物实验报告(篇9)
实 验 报 告
生物传感器 与测试技术
课程名称 生物传感器与测试技术 姓 名 徐梦浙学 号 专 业 生物系统工程指导老师 王建平/叶尊忠
一 热电偶传感器实验
一、 实验目的：
了解热电偶测量温度的原理和调理电路，熟悉调理电路工作方式。
二、 实验内容：
本实验主要学习以下几方面的内容 1. 了解热电偶特性曲线；
2.观察采集到的热信号的实时变化情况。 3. 熟悉热电偶类传感器调理电路。
三、 实验仪器、设备和材料：
所需仪器
四、
myDAQ、myboard、nextsense01热电偶实验模块、万用表
注意事项
五、 在插拔实验模块时，尽量做到垂直插拔，避免因为插拔不当而引起的接插件插针弯
曲，影响模块使用。 六、 禁止弯折实验模块表面插针，防止焊锡脱落而影响使用。 七、 更换模块或插槽前应关闭平台电源。 八、 开始实验前，认真检查热电偶的连接，避免连接错误而导致的输出电压超量程，否
则会损坏数据采集卡。 九、 本实验仪采用的电偶为K型热电偶和J型热电偶。
十、 实验原理：
热电偶是一种半导体感温元件，它是利用半导体的电阻值随温度变化而显著变化的特性实现测温。
热电偶传感器的工作原理
热电偶是一种使用最多的温度传感器，它的原理是基于1821年发现的塞贝克效应，即两种不同的导体或半导体A或B组成一个回路，其两端相互连接，只要两节点处的温度不同，一端温度为T，另一端温度为T0，则回路中就有电流产生，见图50-1（a），即回路中存在电动势，该电动势被称为热电势。
图50-1（a） 图50-1（b）两种不同导体或半导体的组合被称为热电偶。
当回路断开时，在断开处a，b之间便有一电动势ET，其极性和量值与回路中的热电势一致，见图50-1（b），并规定在冷端，当电流由A流向B时，称A为正极，B为负极。实验表明，当ET较小时，热电势ET与温度差（T-T0）成正比
十一、 实验步骤：
十二、 关闭平台电源（myboard），插上热电偶实验模块。开启平台电源，此时可以看到
模块左上角电源指示灯亮。
十三、 打开nextpad,运行热电偶实验应用程序
十四、 查看传感器介绍，了解热电偶的原理及温差与热电势之间的关系。
十五、 在特性曲线页面。选择不同型号的热电偶观察各型号热电偶的V-T，在测温曲线的
下方，手动模拟产生热电势的值，观察测温曲线。
十六、 在实验内容页面中了解实验的内容、操作方式和过程
十七、 在仿真页面任意改变运算放大器的输出电压值和运算放大倍数，记录E（T,T0）和
冷端温度仿真的输出值E（T0），将数据填写到热电偶温度手动测量表中，查表计算热电偶的电势所对应的温度值。 十八、 在测量页面
十九、 选择实际接入的电阻
二十、 在nextsense01中，用杜邦线将R2 R4链接到运算放大器上。
二十一、 调零。将A、B端用杜邦线短接，调节模块右侧下方的电位器，对放大器的输
出Vout进行调零。 二十二、 测量。选择K型或者J型热电偶其中一个，连接到A、B两端，在自动测量页
面，点击页面上的开始按钮进行数据的采集和记录，将热电偶放置到热水中记录温度的变化（温度变化范围至少30度）。 二十三、 在nextpad页面中，点击页面右上的数据保存按钮，选择保存的表格，进行数
据的保存。
二十四、 数据及结论（绘制数据点散图，建立回归方程，分析灵敏度和线性误差）
冷场温度 热电偶输出电势（uV） 20.64 3543.21 20.65 3500.6 20.65 3731.66 20.65 3730.34 20.64 3797.56
测量点温度
87.59 86.81 91.08 91.06 92.3
温度差 66.95 66.16 70.43 70.41 71.66
20.64 20.65 20.65 20.65 20.64 20.65 20.65 20.66 20.66 20.65 20.66 20.65 20.66 20.64 20.66 3815.1 3561.15 3491.3 3509.37 3463.48 3472.74 3514.91 3535.65 3585.15 3601.62 3544.6 3443.76 3421.89 3410.39 3461.66 92.62 87.93 86.63 86.97 86.11 86.29 87.07 87.46 88.38 88.68 87.63 85.76 85.36 85.13 86.1
71.98 67.28 65.98 66.32 65.47 65.64 66.42 66.8 67.72 68.03 66.97 65.11 64.7 64.49 65.44
结论：
实验表明，当ET较小时，热电势ET与温度差（T-T0）成正比，被测传感器的比例系数为54.020。根据半导体的电阻值随温度变化而显著且有规律变化的这一特性，可以实现测温功能。
生物实验报告(篇10)
实验室环境微生物的检测
班级：生物工程123 姓名：赵家熙 学号：2012013409
摘要：空气是人类赖以生存的必须环境，也是微生物借以扩散的媒介。空气中存在着细菌、真菌、病毒、放线菌等多种微生物粒子，这些微生物粒子是空气污染物的重要组成部分。而实验室中的环境是更为重要的，对微生物的要求更加的高，一个好的实验室环境可以让实验结果更加的精确。本实验通过对实验室空气的采集，对微生物的培养及染色观察来证明证明实验室环境存在微生物，也证明无菌操作的重要性。
关键词：实验室环境，空气，微生物检测，革兰氏染色，形态观察
正文：
前言
实验室空气微生物含量多少可以反映该实验室的空气质量，需要测定空气中的微生物数量和空气污染微生物。实验室的空气中微生物越少，代表在该实验室做微生物实验的时候误差会小，成功率会高。本实验以牛肉膏蛋白胨琼脂培养基培养实验室中的微生物，利用革兰氏染色法及显微镜观察实验室中空气中的微生物种类及形态。
1. 材料方法
1.1 实验材料
1.1.1样品来源
实验室空气
1.1.2药品
氢氧化钠（固体），牛肉膏，蛋白胨，琼脂粉，Nacl。
1.1.3耗材
培养基（牛肉膏蛋白胨琼脂培养基）无菌水，石棉网，电炉，酒精灯，培养皿，三角瓶，500ml烧杯，玻璃棒，超净工作台，Ph试纸。
1.2方法
1.2.1取样
采集实验室空气样本
1.2.2制作培养基
在蛋白胨2.0g和氯化钠1.0g，做记号，放在火上加热，待烧杯内各组分溶解后，加入琼脂4.0g，不断搅拌以免粘底。停止加热后冷却，加入配置的NaOH溶液调节PH值至7.2-7.5后倒入三角瓶。
1.2.3高压灭菌
将培养皿和三角瓶用报纸及绳包装后，利用高压灭菌锅将培养皿和装有培养液的三角瓶高压灭菌，121度维持20分钟.
1.2.4分装培养液及加入样本
在超净工作台上将三角瓶中的培养液分装到6个培养皿当中，等培养皿中培养液冷却凝固，将其中三个加入实验室中的空气样本，二个加入超净工作台空气，一个作为对照组。对照组A，实验组B贴标签做记号，倒置放入培养箱中培养。
1.2.5革兰氏染色，观察其种类，形态
将培养好的带有微生物菌落的培养基拿出，取干净的载玻片于实验台上，在载玻片中央滴一滴无菌蒸馏水，将接种环在火焰上烧红，待冷却后从斜面挑取少量菌种与玻片上的水滴混匀后，在载玻片上涂布成一均匀的薄层，涂布面不宜过大。利用高温，手持载玻片的一端，标本向上，在酒精灯火焰外层尽快的来回通过脱色30s，水洗，吸干。复染：用番红
复染3min，水洗，吸干。待标本片干后置显微镜下，用低倍镜观察，发现目标物后用油镜观察，注意细菌细胞的颜色。
2. 结果与分析
2.1 实验结果
图1 图2
图3 图4
图
5
图6
2.2 分析
此次实验实验目的基本完成，但仍存在一些误差。本实验采取如图四，是培养皿中长出的细菌，经查询，此细菌为呼吸道内的杂菌，由于操作时操作者不慎咳嗽将菌注入培养皿中。（3）如图6 使用革兰氏染色法，但镜下观察有重叠现象，制片时为彻底打散细菌。
3. 讨论
本实验除了略微操作失误以外，其他良好，经讨论，我们认为无菌操作时十分重要的，本实验操作简单，步骤清晰，答题没有改动的地方，但在其中一个操作过程中，把培养皿直接放在教室中和超净工作台上是不可取的，导致上述分析中的
（2）失误。我们应该更加注重无菌操作。
3. 参考文献
[1]．《公共场所空气的微生物检测报告》 孙艳萍
[2].《图书馆内外空气微生物检测及资源保护》 王伯秋
[3]. 《基础生物学实验技术》 主编：陈永富 哈尔滨工程大学出版社 2009
生物实验报告(篇11)
一、目的要求：
1.观察血液在血管内的流动。
2.尝试分辨血管的种类以及血液在不同血管内的流动情况。
二、材料用具：
尾鳍色素少的小鱼、显微镜、培养皿、滴管、棉絮。
三、实验步骤：
1、检查实验材料用具
2仔细检查实验材料用具是否齐全
组装、调试显微镜
方式是否正确；组装、调试显微镜的方法是否科学。
四、实验操作与观察
1、用浸湿的棉絮将小鱼头部的鳃盖和躯干部包裹起来，露出口和尾部。
2、将小鱼平放在培养皿中，使尾鳍平贴在培养皿上，并在尾鳍上放载玻片。
3、将培养皿放在载物台上，用低倍显微镜观察尾鳍血管内血液的流动情况。
4、找到管径最小的血管，注意观察血液在这种血管中的流动情况。
5、注意观察管径最小的血管是由什么血管分支而来的，它最终又汇入什么血管中。
五、清洁、整理实验用具
1将显微镜复原，放回显微镜箱。
滴管等冲洗干净并清洁实验桌面。
六、注意事项
1、是否用浸湿的棉絮将小鱼头部的鳃盖和躯干部包裹起来。
2、是否露出小鱼的口和尾部。
3、小鱼的尾鳍是否平贴在培养皿上。
4、是否在小鱼的尾鳍上放载玻片。
5、是否用低倍显微镜观察尾鳍血管内血液的流动情况。